— затем начинают травмировать стелу. Подрезав около 3/4 камбиального кольца, прививке дают «отдохнуть» 7 — 10 дней. В результате подрезания центрального цилиндра добиваются ограничения поступления питательных веществ в привитое растение. Стремясь пополнить недостаток питания, кактус либо увеличивает массу проводящих тканей ксилемы, либо образует придаточные корни, т.к. отток ауксинов из апекса в корень затруднен. Причем ввиду того, что ауксины транспортируются из апекса по теневой стороне стебля, одностороннее освещение прививки и расположение ее так, чтобы ауксины задерживались в травмированном месте стелы, приведет к более быстрому закладыванию зачатков корней.

* ярким доказательством этого факта является плохая укореняемость кактусов, выращенных в привитом состоянии на перескиопсисах.

** в современных системах семейства Cactaceae эти три рода объединены в один род — Ariocarpus

Чаще всего процессы разрастания сегмента стелы и образования придаточных корней проходят параллельно, и кактусоводу остается только окончательно отделить привой, подсушив срез, посадить его в легкий субстрат и поместить в мягкие условия содержания для адаптации к новой среде культивирования.

Привитые пародии и маммиллярии неплохо укореняются, если наложить тугой резиновый жгут на место будущего среза, обязательно на стебле привоя. Примерно раз в неделю жгут разматывают и наматывают снова с большим усилием. При этом клетки запасающей ткани вначале сжимаются до стелы, в дальнейшем сжимаются и травмируются ткани центрального цилиндра. Площадь среза у подготовленного таким образом к снятию с прививки кактуса будет минимальной.

Образование придаточных корней и при способе «механического травмирования центрального цилиндра» и при способе «перетягивания стебля» пойдет успешнее, если кактусовод «поднесет» субстрат к месту корнеобразования. Наиболее просто это сделать, обмотав стебель куском алюминиевой фольги и обжав ее нижнюю часть. В образовавшуюся полость засыпают субстрат, который периодически увлажняют. Подвой же не поливают.

Лучше переносят снятие с подвоя молодые растения. Укоренение и последующее содержание взрослых кактусов требует повышенного внимания. Субстрат для вновь укорененных растений следует составлять очень легким. Плодородный слой помещают в нижнюю часть горшка или плошки, а вновь образованные корни располагают в крупном песке. Полив целесообразнее производить снизу, что стимулирует рост корней в сторону плодородного слоя.

Микроразмножение

Микроразмножение кактусов — сравнительно новый способ их вегетативного размножения, хотя в растениеводческой практике размножение растительных клеток in vitro (в стекле) довольно широко применяется. Для обозначения этого метода в зарубежной и отчасти в отечественной литературе используется термин «микропропагация» (micropropagation), что полностью соответствует «микроразмножению», а иногда и термин «клонирование».

Для любопытного читателя нелишним будет небольшой исторический экскурс.

В конце девятнадцатого века немецкие ботаники Фехтинг и Рехингер проводили опыты по выращиванию небольших кусочков растительных тканей. Однако уровень знаний физиологии растительной клетки в те времена был довольно низок, и их опыты окончились неудачей. То же можно сказать и об экспериментах Габерландта в 1902 году.

Далее в истории микроразмножения наступает почти тридцатилетний перерыв, связанный с поиском объектов, искусственных сред и условий для роста изолированных тканей и клеток.

В 1932 — 1934 годах французскому физиологу Роже Готре и американскому — Филиппу Уайту удалось добиться эффективного роста и развития клеток, взятых из корневой меристемы, камбия древесных растений, а затем клеток из запасающей паренхимы моркови и петрушки. Именно оттуда тянется узенькая тропиночка к современному клонированию суккулснтных растений.

Разработка и совершенствование искусственных питательных сред, использование в качестве доноров для изолированных клеток и тканей все большего количества видов, разработка условий консервирования и длительного хранения изолированных тканевых и клеточных культур — основные вехи экспериментаторской работы ученых в 40 — 50-х годах. Сегодня насчитывается более 400 видов растений, с которыми были проведены подобные опыты.

В настоящее время разработаны методики по выращиванию in vitro культуры тканей на агаровой среде в виде каллюсной массы или в жидкой среде в виде взвеси из одиночных клеток или кусочков ткани.

Культура изолированных органов, тканей и клеток для клонального размножения растений, оздоровления растительного материала от вирусной инфекции, регенерация растений из каллюсных культур имеют широкое практическое применение. В декоративном растениеводстве огромная масса работ проведена по микроразмножению орхидей, сенполий, глоксиний, немало удачных экспериментов проведено над суккулентными растениями и над кактусами, в частности.

Цель этой главы — не только познакомить читателя с методиками клонирования, но и дать рекомендации по культуре изолированных тканей кактусов на агаровой среде применительно к осуществлению этого метода в домашних условиях. При изложении материала автор будет опираться как на результаты своих опытов, так и на работы Р.Г.Бутенко, Н.В.Катаевой, З.Б.Шаминой, В.В.Уманцевой, J.L.Johnson, E.R.Emio, R.Starling, J.R.Ault, W.J.Blackmon, P.W.Clayton, J.F. Hubstenberger, G.C.Phillips и других. С позволения редакции журнала Bradleya автор приводит фотографии из работы W.Stuppy & W.Nagl «Regeneration and propagation of'Ariocarpus retusus Sclieidw. (Cactaceae) via somatic embryogenesis», а также фотографии, предоставленные голландским физиологом R.Wellens специально для иллюстрации этой главы.